Поможем в ✍️ написании учебной работы

Имя

Поможем с курсовой, контрольной, дипломной, рефератом, отчетом по практике, научно-исследовательской и любой другой работой

Выберите тип работыЧасть дипломаДипломная работаКурсовая работаКонтрольная работаРешение задачРефератНаучно - исследовательская работаОтчет по практикеОтветы на билетыТест/экзамен onlineМонографияЭссеДокладКомпьютерный набор текстаКомпьютерный чертежРецензияПереводРепетиторБизнес-планКонспектыПроверка качестваЭкзамен на сайтеАспирантский рефератМагистерская работаНаучная статьяНаучный трудТехническая редакция текстаЧертеж от рукиДиаграммы, таблицыПрезентация к защитеТезисный планРечь к дипломуДоработка заказа клиентаОтзыв на дипломПубликация статьи в ВАКПубликация статьи в ScopusДипломная работа MBAПовышение оригинальностиКопирайтингДругое

Нажимая кнопку "Продолжить", я принимаю политику конфиденциальности

 

ТЕМА: «ПРИГОТОВЛЕНИЕ ПОСТОЯННОГО ГИСТОЛОГИЧЕСКОГО ПРЕПАРАТА»

Время: 3 часа

Хронокарта: 1.Организационная часть с мотивацией темы - 5 мин

                   2.Программированный контроль                     - 10 мин

                   3.Опрос – беседа                                                - 35 мин

                   4.Объяснение препаратов                                 - 10 мин

                   5.Перерыв                                                           - 15 мин

                   6.Контроль за самостоятельной работой

                   студентов. Помощь в работе с препаратами   - 65 мин

                   7.Подведение итогов. Проверка альбомов      - 10 мин

 

Мотивационная характеристика темы: Развитие гистологии как науки и её дальнейший прогресс тесно связаны с совершенствованием методов исследования. Гистология располагает большим арсеналом средств для изучения биологических структур на всех уровнях их организации: клеточном, тканевом, органном. Мето­ды исследования, применяемые гистологией необходимы врачу любого профиля для диагностики, лечения и профилактики заболеваний, познания причин, вызы­вающих болезни и осложнения их течения.

Материалы темы «Гистологическая техника»  способствуют активному фор­мированию мировоззрения будущего врача. Взаимоотношения между структурой и функцией рассматривается с позиции диалектического представления о единстве материи и её движения; нет структуры без функции и нет функции без структуры. Структура является материальным субстратом любой функции организма. Необхо­димо отметить, что прогресс современной гистологии в большей степени опреде­ляется тем, что она основывается на достижениях физики, химии, математики и кибернетики. Внедрение новейших методов исследования обусловило бурное развитие биологических наук, в том числе гистологии, обеспечивает широкое вне­дрение гистологии в клинические дисциплины.

 

 Учебная цель

Общая цель - Знать содержание предмета и общебиологические основы гистологии. Уметь приготовить постоянный гистологический препарат.

Конкретная цель - 1. Знать цели и задачи гистологии, цитологии и эмбриологии. 2. Иметь представление о вкладе отечественных учёных в развитие гистологии. 3. Современное представление о клеточной теории.

4. Знать основные этапы приготовления постоянного гистологического препарата.

Необходимый исходный уровень знаний

Из других предметов и предшествующих тем:

1. Свойства химических веществ.

2. Правила работы со световым микроскопом.

3. Правила работы с кислотами и щелочами.

Из темы текущего занятия:

1. Предмет и задачи гистологии.

2. Клеточная теория.

3. Методика окраски гематоксилин-эозином и по Ван-Гизону.

 

ВОПРОСЫ ДЛЯ САМОПОДГОТОВКИ

1. Гистология и её задачи.

2. Эмбриология и её задачи.

3. Цитология и её задачи.

4. Первые микроскописты.

5. Появление микроскопа в России.

6. Клеточная теория и её современная трактовка.

7. Основные этапы приготовления постоянного гистологического препарата.

 

Рекомендации для работы на занятии.

Задание 1. Изучить этапы приготовления постоянного гистологического препарата.

Программа действий - Постоянный гистологический препарат - это изготов­ленный из тканей и органов объект, позволяющий узнать их структуру с помощью микроскопирования. Он может представлять собой тонкий срез органов, тотальный препарат (мягкая мозговая оболочка, рыхлая соединительная ткань), мазок (крас­ный костный мозг, кровь и пунктат органа), отпечаток органов (печень, селезёнка). Обработка объектов для приготовления из него постоянного гистологического препарата включает следующие моменты: (1) Взятие материала, (2) фиксирование, (3) обезвоживание и уплотнение, (4) заливка в плотные среды, (5) изготовление сре­зов, (6) окрашивание, (7) просветление и заключение в среду, служащую для сохра­нения препаратов.

Взятие материала: объекты, подлежащие исследованию, заби­раются как можно раньше после забоя животного и сразу же фиксируются или за­мораживаются для сохранения структуры органов. В некоторых случаях пользуют­ся иссечением тканей из живого организма (биопсия) с целью диагностического морфологического исследования. Иссечение кусочков проводится острым инстру­ментом (бритвы, секционные ножи) во избежание повреждения тканей. Ножница­ми пользуются при иссечении оболочек (сальник, мягкая мозговая оболочка) и тонкостенных полых органов (желчный пузырь, кишечник). Кусочки из костей выпиливают, иссекают с учетом микроскопического строения того или иного ор­гана или тканей величиной 1-1,5 см³; например почки и надпочечник вырезают с таким расчетом, чтобы в них попали корковое и мозговое вещество, для чего раз­резы ведут перпендикулярно поверхности органов. Из органов, имеющих во всех частях одинаковое строение (печень, селезёнка) объекты можно иссекать в любом участке, но желательно с капсулой. Кусочки из патологически изменённых тканей (опухоли, язвы) вырезают на границе с нормальными тканями так, чтобы были за­хвачены и нормальные, и изменённые участки.

Фиксация. Цель фиксации - закре­пление и сохранение тканевых структур в том виде, в котором они находились в момент забора материала. Это достигается коагуляцией белков фиксирующими жидкостями, которые должны достаточно быстро проникать в ткани и действовать "мягко", не вызывая грубых нарушений тканевых структур (например сморщива­ние, чрезмерное уплотнение). К фиксирующим жидкостям относят формалин, спирт, слабые растворы уксусной, азотной, хромовой и др. кислот, сулему, двухромовокислый калий. Фиксаторы, состоящие из какого - либо одного вещества называются простыми фиксаторами. Чаще применяются сложные фиксаторы, состоящие из смеси нескольких простых фиксирующих компонентов. Так, например, раствор Буэна включает уксусную, пикриновую кислоты и формалин, жидкость Ценкера состоит из двухромовокислого калия и сулемы, а жид­кость Мюллера - это смесь двухромовокислого калия, сульфата натрия в воде. Выбор фиксатора зависит от характера объекта и цели, которая ставится при изготовле­нии препарата. Например, чтобы сохранить в клетках включения жира, следует применять формалин, а не спирт, т.к. он является растворителем жира. В то же время этиловый спирт - наилучший фиксатор при исследовании в клетках железа, гликогена и нуклеиновых кислот. После фиксации кусочки промывают водой, если фиксатор содержит вещество, мешающее дальнейшей обработке (сулема, форма­лин). Если таких веществ нет (спирт или смеси, содержащие спирт), то кусочки не промываются.

Обезвоживание. Уплотнение. Обезвоживание исследуемого образца производят в спиртах возрастающей концентрации (50 °, 60 °, 70 °, 80 °, 90 °, 100°) с целью уп­лотнения ткани и подготовки ее к пропитыванию целлоидином или парафином. В каждом спирте исследуемый образец выдерживают не менее суток.

Заливка. Для того чтобы из кусочка можно было приготовить срез, необходимо придать ему еще более плотную консистенцию. Для этих целей применяются парафин и цел­лоидин. Принцип заливки заключается в последовательном проведении кусочка через ряд жидкостей, из которых каждая предыдущая должна обладать способностью сме­шиваться с последующей. Схема заливки в парафин состоит в следующем: 1.Спирт 100° - 1-2 часа; 2. Смесь 100° спирта и ксилола 1:1 - до погружения кусочка; З.Ксиол (хлороформ) 1час; 4.Раствор парафина в ксилоле - 0,5-1 час; 5.Расплавленный парафин (воск) 1-2 часа. Время каждого этапа заливки вместе с тем определяется особенностями объекта. После пребывания в расплавленном па­рафине в термостате при температуре 37°С -1-2 часа или при 56°С 0,5-1 час, обра­зец полностью пропитывается парафином. В целях полного освобождения объекта от ксилола кусочки проводят последовательно через 2-5 порций расплавленного парафина. Затем кусочек вместе с расплавленным парафином помещают в фор­мочку, где он застывает при комнатной температуре в плотный блок.

Схема заливки в целлоидин состоит в последовательной проводке материа­ла в 100° спирте, смеси спирта и эфира, 5% целлоидине. В каждом растворе цел­лоидина образец выдерживают от 3 до 7 дней, после чего кусочек вследствие ис­парения спирта и эфира застывает в плотный гель. Это позволяет нарезать иссле­дуемый образец с прилежащим целлоидином и наклеить его на деревянный бру­сок. Таким образом, парафиновые блоки могут сохраняться длительное время, а целлоидиновые помещают в 70° спирт для сохранения. Наряду с названными уп­лотняющими средствами, в настоящее время применяют синтетические смолы и полимеры (например, поливакс, карбовакс или полиэтиленгликоль).

Изготовление срезов. Из залитых целлоидиновых и парафиновых блоков готовят срезы необходимой толщины (5-10мкм) на специальных приборах различ­ной конструкции - микротомах. Наиболее распространённым является санный микротом (МС-2), в котором нож и объектодержатель движутся на специальных салазках. Основные части микротома: 1.Станина - массивная чугунная основа, на которую монтируются все остальные узлы. 2. Механизм подъема. 3. Зажим для бло­ка. 4. Ножевые салазки, несущие на себе ножедержатель. Последний укрепляется на салазках рукояткой, позволяющей менять горизонтальный угол расположения ножа. Зажим снабжен подвижной цилиндрической втулкой, перемещение которой с помощью винта меняет угол наклона ножа. 5. Механизм микропередачи состоит из стержня соединённого с тягой храповика микровинта. Эта система поднимает столик с объективом на высоту, соответствующую толщине среза, а движущийся в горизонтальной плоскости нож режет блок. При необходимости получения препа­рата в короткий срок (например, с диагностической целью) используется замора­живающий микротом или криостат. Первый построен по санному принципу, но имеет особенности конструкции и монтажа. Основные его узлы: станина, меха­низм подъёма, бритводержатель и замораживающий столик. Криостат, в свою оче­редь, представляет собой холодильник, в рабочей камере которого установлен микротом. Сравнительно небольшой объём камеры, надежная теплоизоляция, на­личие специального регулирующего механизма, позволяют поддерживать посто­янно заданную минусовую температуру. Таким образом, уплотнение материала при резке на замораживающем микротоме и криостате достигается замораживани­ем образца.

Окрашивание. С тех пор, как было установлено, что отдельные составные части клеток, и межклеточные элементы по-разному воспринимают и удерживают краси­тели, было предложено большое количество окрасок препаратов. Хотя до настоящего времени полностью не выяснена сущность механизмов действия многих краси­телей, несомненно, что в основе окрашивания микроструктур лежат физико-химические процессы. Из физических факторов следует отметить диффузию, ад­сорбцию (поверхностное впитывание) красителя, а также его растворимость, из химических - электролитические свойства красящих веществ в самих тканях. Немаловажное значение имеет плотность тканей и дисперсность самого красителя. Первое свойство определяет последовательность окраски отдельных структур, второе - скорость процесса окраски. На электролитических свойствах основано разделение применяемых в гистологической практике красителей на три группы: основные, кислые и нейтральные. Основной краситель представляет собой красящее основа­ние или его соль и окрашивает клеточные и тканевые структура кислой природы (например: хроматин, ядра, содержащие ДНК, ядрышко, содержащие РНК). Отсю­да и термин - базофилия (любящий основание) для обозначения тканевых компо­нентов, окрашивающихся красителями, таким как тионин, гематоксилин, метило­вый зелёный, кармин, азур, сафранин и др. Кислотный краситель - это красящая кислота и её соль, в силу чего она окрашивает вещества и частицы основной при­роды, например гранулы эозинофильных лейкоцитов, цитоплазму большинства клеток. Отсюда оксифилен для тканевых элементов, красящихся кислотными краси­телями, к которым относятся эозин, кислый фуксин, конго красный, анилино­вый синий и др. Нейтральный краситель образуется при соединении водных рас­творов кислотного и основного красителя, например судан - 3, эозиновокислый ме-тиленовый синий. Кроме того, в гистологической практике часто используются специальные красители. Так, например, для выявления жира применяется судан - 3 и шарлах красный. Первый окрашивает жир в желтый, а второй - в оранжевый цвет. Осмиевая кислота окрашивает жиры в черный цвет. Эластические волокна при обработке орсеином окрашиваются в коричневый цвет, резорцин фуксином в темносиний цвет, а пикрофуксин окрашивает их в желтый цвет. Для выявления нервных элементов, клеточных границ и органоидов в различных тканях применя­ется импрегнация (пропитывание) раствором азотистокислого серебра, осмиевой кислоты, хлорного золота, основанная на восстановлении свободных металлов и осаждении их на исследуемых структурах.

Просветление и заключение. Сохранение прозрачности, окраска и структур­ная целостность постоянного гистологического препарата обеспечивается просветлением и заключением препарата в специальные среды. Средой для заключе­ния служат смола канадской основы (канадский бальзам) и пихтовая смола, упот­ребляющиеся в виде густых растворов этих смол в ксилоле. Применение их при пред­варительном обезвоживании абсолютным спиртом и просветлении ксилолом. При отсутствии смол можно пользоваться дамарным лаком (60% раствор смолы деревьев рода произрастающих в Индии) или раствором канифоли в спирте, кото­рый получают из различных видов сосны. В тех случаях, когда по условиям обра­ботки препарат не может соприкасаться со спиртом, ксилолом и т.п. (например окраски на жиры) его заключают в среду (глицерин, глицерин-желатин), которые, кроме того, обладают просветляющими свойствами. Например, широко распро­страненными методами окраски препаратов является окраска гематоксилин-эозином и по Ван-Гизону.

Особенности методики приготовления постоянных гистологических препа­ратов некоторых органов и тканей:

I .Обработка и окрашивание костной ткани. Наличие в межклеточном веществе костной ткани солей кальция придаёт ей твёр­дость, затрудняющую приготовление препаратов. Поэтому обработка костной тка­ни включает приготовление срезов после специальной предварительной подготов­ки объекта - декальцинацией в водном растворе азотной кислоты 5-7% концен­трации, кроме того, одним из способов получения препаратов из костной ткани яв­ляется приготовление тонких костных пластинок (шлифов) из клубочков нефикси­рованной костной ткани путём стачивания последних. Наиболее распространенным методом окраски срезов декальценированой кости является окраска по Шморлю (тионином с пикриновой кислотой), после чего общий фон срезов приобретает ко­ричневый или болотный цвет, а костные клетки и их отростки окрашиваются в красный.

II .Приготовление тотальных препаратов. В тех случаях, когда необходи­мо изучить микроскопическую структуру объекта, имеющего пленочное строение (серозные, мозговые оболочки), готовят целостные тотальные препараты. Для это­го участок пленки во избежание складок расправляют и фиксируют на ровной по­верхности. По окончании фиксации материал обрабатывают обычным способом или, если объект сам по себе достаточно тонок и имеет естественную окраску, то можно ограничиться лишь фиксацией, просветлением и заключением его (напри­мер, при выявлении пигментных клеток твёрдой и мягкой мозговых оболочек) или фиксацией, окрашиванием (препарат мелких сосудов мягкой мозговой обо­лочки).

III . Приготовление и окраска мазков крови. Для морфологического иссле­дования клеток крови и подсчета лейкоцитарной формулы готовят мазок крови. Он должен отвечать следующим условиям: 1.Начинаться на расстоянии 1 см от края предметного стекла и заканчиваться, не доходя до края противоположной стороны на 2-3 см. 2. Препарат должен быть равномерной толщины, а не волнооб­разным. 3. Слой крови не должен достигать краев стекла. В противном случае в мазке эритроциты будут лежать густым слоем, и образовывать монетные столбики, фиксируют метиловым (этиловым) 100° спиртом и окрашивают по методу Рома­новского - Гимза (азур-2 с эозином). Первый окрашивает базофильные структуры клеток в ярко-синий цвет, а эозин-оксифильные части в розово-красный.

IV . Гистологические препараты для пунктатов органов. Диагностическая пункция (взятия материала с помощью специальных игл) всё больше входят в гистологиче­скую практику. Гистологические препараты из пунктата обладают преимуществом перед мазками, поскольку они позволяют изучить структуру нормальной и патоло­гически измененной ткани. Пунктат смешивают в чашке Петри с раствором ли­моннокислого натрия для предупреждения свёртывания крови. После кратковременного стояния жидкое содержимое сливают, а осевшие плавающие частички со­бирают на полоску фильтровальной бумаги. Эту процедуру проводят несколько раз. Собранный материал вместе с фильтровальной бумагой фиксируют в зависи­мости от взятого органа (например, печень в 10% формалине, костный мозг в жид­кости Ценкера) и по окончании фиксации - промывка в проточной воде, проводят через спирты и заключают в парафин, предварительно отделив фильтровальную бумагу. Окраска производится в зависимости от цели исследования.

 

Задание 2. Окрасить целлоидиновые срезы методом гематоксилин-эозином.

Объект изучения - Целлоидиновые срезы органов.

Ориентировочные основы действий - 1. Срезы из дестиллированной воды перено­сят в раствор гематоксилина на 2-5 мин. Затем срезы помещают в проточную воду на 10 мин. Затем их переносят в дестиллированную воду, а затем - в раствор пикрофуксина на 3-5 мин и быстро споласкивают дестиллированной водой. Проводят через 96° спирт (быстро). Просветляют в скипидаре, карбол-ксилоле в течение 2-Змин. Заключаем в бальзам, затем покрывают стеклом.

 

Задание 3. Окрасить целлоидиновые срезы методом по Ван-Гизону.

Объект изучения - Целлоидиновые срезы органов.

Ориентировочные основы действий - Срезы из дестиллированной воды перено­сят в раствор гематоксилина на 2-5 мин. Затем срезы помещают в проточную воду на 10 мин. Затем срезы переносят из проточной воды в дестиллированную воду, а затем - в раствор пикрофуксина на 3-5 мин. Быстро споласкивают дестиллирован­ной водой. Проводят через 96° спирт (быстро). Просветляют в скипидаре, кар­бол-ксиоле в течение 2-Змин. Заключают в бальзам, затем покрывают стеклом.

 

Вопросы для самоконтроля

1. Какими методами окраски можно пользоваться для выявления жировых вклю­чений?

2.Какими методами окраски можно пользоваться для выявления эластических структур?

3. Какими методами окраски можно пользоваться для выявления гликогена?

4. Какой метод исследования можно применять для выяснения источников и путей иннервации органов?

5.Каким методом микрокопирования необходимо воспользоваться для определе­ния сухого веса клетки?

 

Основная и дополнительная литература

Основная литература: 1)Учебник гистологии (под ред. Ю.Л. Афанасьева, Н.А. Юриной). М. , «Медицина», 1999. 2) Учебник гистологии (под ред. Ю.И. Афанасьева, Н.А. Юриной). М. , «Медицина», 1989. 3) Г.Э. Улумбеков «Гистология», 1997. 4) З.С. Канцельсон, И. Д. Рихтер «Практикум по гистологии цитологии и эмбрио­логии» 1963. 5) Ю.С.Ченцов «Общая цитология» , 1978. 6) Г. А. Меркулов «Курс патогистологической техники», 1969. 7) Лекционный курс.

Дополнительная литература: 1) М. Уикли «Электронная микроскопия для начинающих», 1978, М. "Мир". 2) Н.Луппа «Гистохимия», 1979, «Мир».

 

ТСО и средства наглядности

1. Микроскопы

2. Диапроектор «Альфа»

3. Слайды. 1. Эндотелий капилляров (импрегнация азотнокислым серебром).

2. Гликоген в атипичных мышцах сердца (ШИК - реакция). 3. Артерии   эластического типа (Орсеин). 4. Извитые канальцы почки (гематокселин - эозином) 5. Атипичные мыщечные клетки стенки сердца (Маллори).

 6. Холинергические нервные волокна сосудов головного мозга (окраска с глиоксиловой кислотой).

4. Демонстрационные препараты:

1.Матка (метод щелочная фосфатаза). 2. Матка ( метод магниевая АТФ- аза). 3.Матка (метод бутирилхолинэстераза). 4.Матка (наливка сосудов тущью).   5. Почка (метод щелочная фосфатаза).   6. Почка (гематоксилин - эозином)

 

 Домашнее задание - см. методическую разработку лабораторных занятий для студентов по теме: «Формы организации живой материи. Цитоплазма и ядро клетки».

МЕТОДИЧЕСКАЯ РАЗРАБОТКА ЛАБОРАТОРНОГО ЗАНЯТИЯ № 3

ДЛЯ СТУДЕНТОВ