Со сниженной чувствительностью и устойчивых к оптохину
Поможем в ✍️ написании учебной работы
Поможем с курсовой, контрольной, дипломной, рефератом, отчетом по практике, научно-исследовательской и любой другой работой

от других представителей семейства Streptococcaceae и Enterococcus

Виды стрептококков Тест с желчью Рост при + 45° С   ПИРА-тест Тест с гиппуратом натрия
Streptococcus pneumoniae + - - -
Streptococcus pyogenes - - + -
Streptococcus agalactiae (–) - - +
Streptococcus spp . (группы viridians ) (–) (+) (–) (–)
Enterococcus spp . - + + (+)

+ – признак положительный

– – признак отрицательный

(+) – признак чаще положительный

(–) – признак чаще отрицательный

Клинически значимым при остром воспалительном процессе, считают выделение S . pneumoniae из мокроты в количестве > 105 КОЕ/мл; из БАЛ > 104 КОЕ/мл; из биоптата, полученного с помощью защищенных щеток > 103 КОЕ/мл (МУ 4.2.3115 -13). При исследовании стерильных жидкостей организма (кровь, плевральная жидкость, ликвор) для постановки этиологического диагноза пневмококковой инфекции основанием служит выделение S . pneumoniae в любом количестве.

 

Определение чувствительности к антибиотикам

Оборудование:

- ламинарный бокс 2-го класса биологической безопасности;

- термостаты электрические для выращивания бактерий, поддерживающие температуру в камере в пределах +35 (± 1) °С;

- анаэростат или CO2-инкубатор, поддерживающий температуру в камере в пределах +35 (± 1) °С, содержание CO2 на уровне 3 - 7 %;

- холодильник фармацевтический, поддерживающий температуру +4 + 8 °С для хранения культур, биологических субстратов и реагентов;

- спиртовки (газовые горелки);

- дозаторы переменного объема полуавтоматические (автоматические);

- прибор для определения концентрации бактериальных клеток (стандарт мутности по Мак-Фарланду);

- дополнительное оборудование для автоматизации процесса выделения и изучения микроорганизмов (автоматические анализаторы, диспенсеры дисков, приборы для оценки антибиотикочувствительности диско-диффузионным методом и методом серийных разведений и пр.);

- приборы и программы информационного обеспечения (компьютер, принтер, электронные информационные системы).

Реагенты

- питательные среды для определения чувствительности S . pneumoniae на базе обогащенных субстратов универсальные (МХА с 5% кровью);

- диски с антибиотиками профильной группы, E-тесты, планшеты и стрипы с лиофилизированными бульонами и серийными разведениями антимикробных препаратов;

Средства дезинфекции:

Дезинфицирующие средства в концентрации и времени экспозиции, указанных в инструкциях по их использованию.

 

  Лабораторная посуда и расходные материалы:

- чашки бактериологические (Петри) для выращивания микробиологических культур;

- шпатели, тампоны-зонды для посева, пересева биологических материалов, выросших культур микроорганизмов;

- штативы и поддоны для пробирок и контейнеров, чашек Петри;

- петли бактериологические;

- наконечники стерильные для дозаторов переменного объема;

- посуда мерная лабораторная стеклянная и пластиковая;

- газогенераторные пакеты;

- пипетки пластиковые пастеровские градуированные для стандартизации объема и переноса жидкостей;

- перчатки резиновые;

- контейнеры и емкости для обеззараживания медицинских отходов.

 

 Методами определения антибиотикочувствительности пневмококков являются: метод серийных разведений (количественный, референтный); диско-диффузионный метод (полуколичественный); Е-тест (промежуточный).

В национальных Федеральных клинических рекомендациях (ФКР) «Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам», 2014г. даны методология оценки чувствительности S . pneumoniae к антимикробным препаратам, пограничные значения МПК и зон подавления роста для определения клинических категорий чувствительности, экспертные правила оценки чувствительности по системе EUCAST.

Учитывая, что в большинстве клинических лабораторий России основным методом является диско-диффузионный, ниже приводятся параметры его постановки, согласно ФКР.

Питательная среда: агар Мюллер-Хинтон + 5% дефибринированной лошадиной крови и 20 мг/л β-НАД (МХ-П);

Инокулюм: показатель мутности 0,5 по стандарту МакФарланда (при использовании колоний с кровяного агара) и 1,0 (с шоколадного агара);

Инкубация: 5% СО2, 35 ± 1 º С, 18 ± 2ч.;

Учет результатов: Чашку Петри помещают дном книзу так, чтобы свет падал на поверхность агара под углом 45º С (в отраженном свете), снимают крышку. При измерении зон ориентируются на зону полного подавления видимого роста. При показателе S (чувствительный) инкубацию продлевают до 24 ч.;

Контроль качества: Streptococcus pneumoniae АТСС 49619.

Необходимо помнить, что пневмококки, как все грамположительные бактерии, обладают природной устойчивостью к азтреонаму, темоциллину, полимиксину В (колистину) и налидиксовой кислоте, как представители стрептококков – к фузидиевой кислоте и аминогликозидам.

Скрининговым тестом для оценки чувствительности S . pneumoniae к бета-лактамным антибиотикам является определение чувствительности к оксациллину (1 мкг в диске). Именно с него начинают изучение лекарственной чувствительности пневмококков и выявляют пенициллинустойчивые штаммы. Базовыми антибиотиками для изучения антибиотикограммы могут быть моксифлоксацин, эритромицин, клинидамицин и тетрациклин. Антибиотиками резерва – хлорамфеникол, триметоприм/сульфаметоксазол, ванкомицин, линезолид, рифампицин (таб. 3).

Таблица 3.

Критерии интерпретации результатов определения чувствительности S . pneumoniae : диаметры зон подавления роста (мм) и пограничные значения МПК (мг/мл)

Антимикробных препаратов

 

Антимикробный препарат

Содержание в диске (мкг)

Диаметры зон подавления роста (мм)

Пограничные значения МПК

(мг/л)

Примечание:

S ≥ R < S ≤ R >

Скрининг

Оксациллин 1 20 - - - Штамм, чувствительный к оксациллину чувствителен ко всем β-лактамным антибиотикам для которых разработаны пограничные значения (см. ФКР). При устойчивости к оксациллину во всех случаях к β-лактамным антибиотикам требуется определение МПК (метод серийных разведений, Е-тест)

Базовые препараты

Моксифлоксацин 5 22 22 0,5 0,5 Возможно проведение скрининга с норфлоксацином. Изоляты, чувствительные к норфлоксацину (зона ≥ 12 мм при концентрации в диске 10 мкг), расцениваются, как чувствительные к моксифлоксацину. Эритромицин 15 22 19 0,25 0,5 Штамм, чувствительный к эритромицину считается чувствительным к азитромицину, кларитромицину и рокситромицину. Клиндамицин 2 19 19 0,5 0,5 Анттагонизм между клинидамицином и макролидами (при постановке теста диски с эритромицином и клинидамицином располагают на расстоянии между краями дисков 12-16 мм) свидетельстует о наличии индуцибельной резистентности к клиндамицину (D – феномен). Монотерапия клинидамицином противопоказана из-за риска формирования полной резистентности. Если антагонизм не выявляется, изолят расценивют как чувствительный. Тетрациклин 30 25 22 1 2 Штамм, чувствительный к тетрациклину, является чувствительным к доксициклину и миноциклину. Для штаммов, устойчывых к тетрациклину, требуется определение МПК к доксициклину и миноциклину.

Препараты резерва

Хлорамфеникол 30 21 21 8 8   Триметоприм /сульфаметоксазол 1,25/23,75 18 15 1 2   Ванкомицин 5 16 16 2 2   Линезолид 10 22 19 2 4   Рифампицин 5 22 17 0,06 0,5  

S – чувствительный, R – устойчивый   (интервальные отклонения относятся к промежуточному критерию чувствительности/устойчивости – I )

 

Номенклатуру антимикробных средств, используемых при постановке антибиотикограммы, необходимо адаптировать в каждом медицинском учреждении с учетом специфики лечебно-диагностического процесса.

 

Латекс-агглютинаци я

 

Оборудование:

- ламинарный бокс 2-го класса биологической безопасности;

- термостаты электрические для выращивания бактерий, поддерживающие температуру в камере в пределах +35 +37 (± 1) °С;

- центрифуга лабораторная;

- анаэростат или CO2-инкубатор, поддерживающий температуру в камере в пределах +37 (± 1) °С, содержание CO2 на уровне 3 - 7 %;

- холодильник фармацевтический, поддерживающий температуру  + 4 + 8 °С для хранения культур, биологических субстратов и реагентов;

- водяная баня (сухо-воздушный инкубатор);

- приборы и программы информационного обеспечения (компьютер, принтер, электронные информационные системы).

Реагенты :

- диагностические наборы (тест-системы) для проведения латекс-агглютинации.

Средства дезинфекции:

Дезинфицирующие средства в концентрации и времени экспозиции, указанные в инструкциях по их использованию.

 

Лабораторная посуда и расходные материалы:

- одноразовые стерильные контейнеры с устойчивым основанием, тампоны-зонды (Swab) для сбора и транспортирования образцов биологического материала;

- шпатели, тампоны-зонды для посева, пересева биологических материалов, выросших культур микроорганизмов;

- штативы и поддоны для пробирок и контейнеров, чашек Петри;

- пипетки пластиковые пастеровские градуированные для стандартизации объема и переноса жидкостей;

- перчатки резиновые;

- контейнеры и емкости для обеззараживания медицинских отходов.

 

При тестировании биологических материалов (ликвор, сыворотка) для реакции используют прозрачную надосадочную жидкость образца, предварительно прогретого в сухо-воздушном инкубаторе или на водяной бане и центрифугированного (профильтрованного) для получения прозрачной надосадочной жидкости. Минимальный объем для тестирования 0,5 мл. Одну каплю каждого латексного реактива (предварительно реактивы рекомендуют тщательно встряхнуть) наносят на специальные бумажные карты, приложенные к набору. Затем добавляют 30 мкл исследуемого материала (надосадочная фракция) к каждой капле латексного реактива. Перемешивают чистым аппликатором. Осторожно покачивают бумажную карту. Агглютинация в течение 2 мин свидетельствует о присутствии в испытуемом образце специфического антигена.

Для обнаружения антигена в бактериальной культуре, выделенные на питательном агаре изоляты, собирают петлей (в количестве 10-12колоний), тщательно эмульгируют в физиологическом растворе, предварительно нанесенном на агглютинационную карту, для получения гомогенной суспензии. Латексный реагент, содержащий сенсибилизированные кроличьи антитела, специфичные для S . pneumoniae наносят на карту, перемешивают с полученной суспензией и регистрируют на наличие четкой агглютинации в течение 2 мин. (рис. 3).

Рисунок 2. Латекс-агглютинация: положительный (слева) и отрицательный (справа) результаты.

Для выполнения реакции латекс-агглютинации используют наборы латексных диагностических препаратов, например, Slidex pneumo-Kit (BioMerieuх).

В настоящее время выпускают наборы с различными комбинациями моноклональных антител для выявления антигенов наиболее часто встречаемых в диагностике бактериальных менингитов (S . pneumoniae , N . meningitidis (серогруппы А, В, С, Y/W 135), H influenzae тип В, S . agalactiae группы В, E . coli K1 и др.).

 

Иммунохроматографический анализ (ИХА)

 

Оборудование:

- ламинарный бокс 2-го класса биологической безопасности;

- холодильник фармацевтический, поддерживающий температуру + 4 + 8 °С для хранения культур, биологических субстратов и реагентов;

- приборы и программы информационного обеспечения (компьютер, принтер, электронные информационные системы).

Реагенты :

- диагностические наборы реагентов (тест-системы) для выявления антигенов ДНК возбудителя;

Средства дезинфекции:

Дезинфицирующие средства в концентрации и времени экспозиции, указанных в инструкциях по их использованию.

 

 Лабораторная посуда и расходные материалы:

- одноразовые стерильные контейнеры с устойчивым основанием, тампоны-зонды (Swab) для сбора и транспортирования образцов биологического материала; 

- штативы и поддоны для пробирок и контейнеров;

- наконечники стерильные для дозаторов переменного объема;

- пипетки пластиковые пастеровские градуированные для стандартизации объема и переноса жидкостей;

- перчатки резиновые;

- контейнеры и емкости для обеззараживания медицинских отходов.

 

Для проведения иммунохроматографического экспресс-теста используют тест-кассету в герметичной упаковке (фольга) в форме открывающейся книжки (рис.4).

 

Рис. 4 . Тест система для иммунохроматографического метода

 

Тест-кассета содержит мембрану с нанесенными на нее в виде двух отдельных полосок кроличьими антителами к антигену S . pneumoniae и козьими антителами против IgG кролика в комбинации с конъюгатом из кроличьих антител к антигену S . pneumoniae и антивидовых антител, конъюгированных с окрашенными частицами. Вторая полоска дает контрольную линию, проявляющуюся розовым или красным цветом. Кассета имеет лунку, расположенную на противоположной стороне устройства, для внесения в тест исследуемого образца. В комплект входят Реагент А – (1 пластиковый флакон-капельница – 5,0 мл) цитратно-фосфатный буфер с лаурил-сульфатом, Твином-20 и азидом натрия, тампоны для отбора образца мочи пациента, разработанные специально для использования в тесте, положительный контрольный тампон с высушенными на тампоне инактивированными S . pneumoniae и отрицательный контрольный тампон.

Перед постановкой реакции охлажденный или замороженный образец следует разморозить. Мочу для исследования непосредственно перед тестированием перемешивают легким вращательным движением. Стерильный тампон на аппликаторе, прилагаемый к диагностическому набору, погружают в мочу и помещают в кассету. Из пластиковой капельницы в кассету добавляют 3 капли реагента А (рис.5).

 

Рис. 5 . Постановка иммунохроматографического экспресс-теста

По окончании процедуры устройство закрывают, чтобы привести исследуемый образец мочи в контакт с тест - полоской.

При наличии в моче антигена S.pneumoniae происходит его связывание с находящимися на подложке антителами окрашенного конъюгата, а также с иммобилизированными на мембране кроличьми антителами к антигену S.pneumoniae, в результате чего возникает окрашенная розовая или красная линия в зоне чтения образца. Иммобилизированные на полоске в виде линии козьи антитела против IgG кролика также связывают окрашенный конъюгат и формируют вторую линию - контрольную.

Положительный результат регистрируют через 10-15 минут по наличию двух окрашенных линий в зоне чтения. На отрицательный результат указывает одна окрашенная контрольная линия, свидетельствующая об отсутствии антигена S.pneumoniae в тестируемом образце. Отсутствие окрашенной контрольной линии указывает на недействительные результаты.     

Положительные и отрицательные контрольные образцы должны ставиться для каждого вновь открытого набора или в каждом отдельном случае согласно требованиям процедуры внутри лабораторного контроля качества. Для постановки контрольных реакций из пластиковой капельницы в кассету добавляют 6 капель реагента А.

 

Дата: 2018-12-28, просмотров: 283.