Материалы и методы исследования
Поможем в ✍️ написании учебной работы
Поможем с курсовой, контрольной, дипломной, рефератом, отчетом по практике, научно-исследовательской и любой другой работой

 

Работа выполнена на базе животноводческого комплекса по производству молока в ГП ОПХ “1 Мая” Октябрьского района Республики Мордовия.

Методика включала эпизоотологическое обследование комплекса. Был проведен анализ ветеринарной документации. При этом выясняли условия комплектования стада, организацию содержания и кормления животных, экономические связи хозяйства.

В процессе обследования собран материал о распространении ИРТ, выяснены причины возникновения эпизоотического очага, факторы способствующие распространению инфекции среди крупного рогатого скота хозяйства.

Диагноз на ИРТ ставился комплексным методом, с учетом эпизоотологических, клинических, патологоанатомических данных и результатов лабораторных исследований.

В лабораторию для исследования от больных животных стерильными тампонами брали мазки со слизистой носовой полости, влагалища, глаз. Тампоны с материалом помещали в стерильные пеницелиновые флаконы с 2-5 мл., раствора Хенкса, содержащие 1000 ЕД/мл., пенициллина и 1000 мкг/мл., стрептомицина.

Мазки брали от больных животных в период максимального проявления у них клинических признаков (высокая температура тела, угнетение, воспалительные процессы в верхних дыхательных путях, сопровождающиеся серозными или слизистыми истечениями из носовой полости, глаз, влагалища).

От голов вынужденно убитых телят, в возрасте от 6 до 7 месяцев, брали кусочки носовой перегородки, трахеи, легких, селезенки, почки, средостенные и брыжеечные лимфатические узлы и кусочки тонкого отдела кишечника, так как в клинике появились и расстройства желудочно-кишечного тракта.

Паталогический материал в термосе со льдом отправляли нарочным в Республиканскую ветеринарную лабораторию. Для ретроспективной серологической диагностики на ИРТ, дополнительно направляли также сыворотки крови от 10 больных и переболевших телят с интервалом в 18 дней.

В лаборатории слизь и патологический материал были исследованы на обнаружение и индефикацию агента ИРТ в ИФ и РПД , ретроспективная диагностика проводилась на определения нарастания титра антител в РНГА, РДП и РН (Б.И. Антонов, и др., 1987).

С появлением инфекции на животноводческом комплексе проводился ежедневный клинический осмотр всего поголовья КРС, с измерением температуры тела у подозреваемых по заболеванию животных. Всех больных животных переводили в отдельные клетки и назначали лечение.

Для лечения была оборудована специальная герметическая камера на 20 голов (из расчета 1-1,5 м3 на голову) , обшита полиэтиленовой пленкой и снабжена приточно-вытяжной вентиляцией. Ингаляционную групповую терапию проводили аэрозольным генератором САГ-1, обеспечивающим получение аэрозолей с диаметром частиц в пределах 0,5-10,0 мкм., и производительностью распыления жидкости 30-80 мл/мин. Для создания пневматического давления от 2 до 4 кг/см2., и обеспечивающим расход воздуха до 100 литров в минуту использовали компрессор СО-7-16.

В качестве специфических средств для лечения больных животных применяли гипериммунную сыворотку против ИРТ аэрозольно в дозе 10-15 мл., на животное в смеси с тетрациклином из расчета 3000 ЕД/ кг.

Из противомикробных средств применяли ампециллин, канамецин, предварительно проверив к ним чувствительность бактериальной микрофлоры дыхательных путей.

Для приготовления растворов антимикробных препаратов использовали физиологический раствор хлорида натрия или 0,5%-ный раствор новокаина. С целью стабилизации аэрозолей и уменьшения раздражающего действия препарата на слизистые оболочки дыхательных путей добавляли 10%-ный раствор глицерина или раствор 10%-ой глюкозы к общему объему жидкости.

Дозировку лекарственных средств расчитовали по формуле :

 

С=А/(Д*Т* К), где:

 

 А – доза ингалируемого препарата;

 Д – минутный объем дыхания, л ;

 Т – время экспозиции в минутах ;

 К – коэффициент адсорбции препарата в респираторных органах (коэффициент адсорбции в респираторных органах равен 50% или 0,5).

Минутный объем дыхания для теленка весом 70 кг., равен 22 литрам (А.С. Горбунов, 1988).

Например, для теленка массой 70 кг., доза стрептомицина составляет 350 тыс. ЕД, минутный объем дыхания равен 22 литра, при экспозиции 30 минут и коэффициенте адсорбции 0,5, концентрация стрептомицина расчитовается следующим образом :

С=35000 ЕД/(22*30*0,5)=10,60 ЕД/л или 1млн. 60 тыс. ЕД на 1 м3 аэрозольной камеры, то есть на 20 голов телят следует взять: 1 млн. 60 тыс. ЕД * 20 = 21,2 млн. ЕД стрептомицина.

 

Дата: 2019-07-30, просмотров: 167.